Braz J Med Biol Res, April 1997, Volume 30(4) 465-469

Atrial natriuretic peptide and feeding activity patterns in rats

M.H.A. Oliveira1, J. Antunes-Rodrigues3, J. Gutkowska2, A.M.O. Leal4, L.L.K. Elias4 e A.C. Moreira4

1Departamento de Medicina, Universidade Federal de Sergipe, 49060-100 Aracaju, SE, Brasil
2Centre de Recherche Hôtel-Dieu de Montreal, Pavilion Marie-de-la-Ferre, Montréal, Québec, H2W 1T8, Canada
Departamentos de 3Fisiologia e 4Clínica Médica, Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, 14048-900 Ribeirão Preto, SP, Brasil

Abstract
Testo

Ringraziamenti
Corrispondenza e note a piè di pagina

Abstract

Questa revisione presenta dati storici sul peptide natriuretico atriale (ANP) dalla sua scoperta come fattore natriuretico atriale (ANF) al suo ruolo come ormone natriuretico atriale (ANH). Come ormone, ANP può interagire con l’asse ipotalamo-ipofisi-surrene (HPA-A) ed è legato ai modelli di attività alimentare nel ratto. La restrizione alimentare ha dimostrato di essere un modello interessante per indagare questa relazione. Il ruolo di ANP deve essere compreso in un contesto di interazioni periferiche e centrali che coinvolgono diversi peptidi e percorsi.

Parole chiave: peptide natriuretico atriale, corticosterone, ACTH, restrizione alimentare

Un fattore, all’inizio

La scoperta di un fattore natriuretico dagli atri cardiaci (1,2) ha portato all’ulteriore caratterizzazione di un complesso sistema ormonale natriuretico, tra cui un pro-ormone di 126 aminoacidi sintetizzato all’interno dei miociti del cuore e immagazzinato in granuli per il rilascio in circolazione. Questo sistema ormonale comprende diversi peptidi come il pro-ormone pro-atrial natriuretic factor (ANF) 1-30, uno stimolatore di sodio a lunga durata d’azione, pro-ANF 31-67, un vasodilatatore, pro-ANF 79-98, uno stimolatore kaliuretico, e pro-ANF 99-126. Ognuno di questi peptidi ha proprietà di abbassamento della pressione sanguigna, diuretiche, natriuretiche e/o kaliuretiche sia nell’uomo che negli animali. Quando vengono rilasciati nella circolazione, questi peptidi circolano come un 28-aminoacido C-terminale (cioè, ANF) di questo pro-ormone e come un 98-aminoacido N-terminale che è proteoliticamente scisso in pro-atrial natriuretic peptide (ANP) 31-67 e pro-ANF 1-30. I peptidi migliorano la forma particolare dell’enzima guanilato ciclasi aumentando il messaggero intracellulare cGMP che ha dimostrato di essere il mediatore finale della vasodilatazione osservata e natriuresi secondaria ai peptidi natriuretici atriali (3,4). Un singolo gene ANF è stato identificato in tutte le specie di mammiferi esaminate finora. Nell’uomo questo gene si trova sul cromosoma 1, banda p36, ed è uno di un gruppo sintenico che è presente sul cromosoma 4 del topo. Il gene consiste di tre esoni separati da due introni. Più recentemente sono stati identificati il peptide natriuretico cerebrale (BNP) e il peptide natriuretico di tipo C (CNP) e almeno tre sottotipi di recettori (5). In questa revisione useremo il nome ANP anche se il termine ormone natriuretico atriale (ANH) sarebbe più appropriato.

Atriale, ma non solo atriale

ANP è stato identificato in molti tessuti diversi e può avere diverse importanti funzioni fisiologiche diverse dalla natriuresi e vasodilatazione. Nel cervello esiste come forma amino-terminalmente troncata. Due sistemi sono coinvolti nella secrezione di ANP: ANP periferico (cuore e plasma) e centrale ANP (paraventricolare, periventricolare, arcuato e nuclei preottico-mediale e altri siti) (6). Nonostante la barriera emato-encefalica, questi sistemi comunicano attraverso gli organi circumventricolari, l’organum vasculosum lamina terminalis e l’organum subfornicalis (7-9). Essi sono collegati da sinapsi neuronali (9-14), o dalla scarica di peptidi come la vasopressina (15), endotelina (11) e ossitocina (16) dall’ipotalamo. Pertanto, ANP può partecipare al controllo di diverse funzioni come la riduzione dell’attività del sistema renina-angiotensina-aldosterone e l’inibizione dell’assunzione di sale e acqua nel ratto (17,18). Tuttavia, l’ANP proveniente dal nucleo paraventricolare (PVN) è responsabile dell’87-92% del contenuto di ANP nell’eminenza mediana ed è coinvolto nella regolazione della funzione dell’ipofisi anteriore (19). Diversi esperimenti che utilizzano tecniche di immunoneutralizzazione hanno dimostrato che l’ANP, oltre a partecipare al controllo della secrezione di LH e prolattina (20,21), può essere un fattore che inibisce il rilascio di corticotropina (21-24).

Natriuretico, ma dove?

ANP è stato scoperto sulla base delle sue proprietà farmacologiche di produrre diuresi e natriuresi, anche se alla periferia la sua azione vasodilatatrice è probabilmente più importante. Topi transgenici con livelli di ANP da 2 a 10 volte i valori normali mostrano un’omeostasi di fluidi ed elettroliti essenzialmente normale, un fatto che depone contro un ruolo fondamentale dell’ANP periferico nel metabolismo dell’acqua e del sodio. Tuttavia, i topi con i più alti livelli di ANP erano significativamente ipotensivi indicando che questi effetti farmacologici renali del peptide sono meno importanti delle sue azioni emodinamiche (4). D’altra parte, nei ratti o nell’uomo, alte concentrazioni di ANP sono ipotensive anche quando sono inferiori alle concentrazioni naturali nel sistema portale ipofisario, e sono in grado di inibire la secrezione di ACTH in vitro (25). Tuttavia, in condizioni appropriate, l’antagonismo tra il sistema dei peptidi natriuretici e il sistema renina-angiotensina può promuovere la natriuresi. Per esempio, l’inibizione di ANP del rilascio di vasopressina indotta dallo stress può aumentare la perdita di acqua renale e la diminuzione del rilascio di ACTH indotta da ANP può portare a una riduzione della secrezione di aldosterone, diminuendo così la ritenzione di sodio indotta dallo stress (26), un meccanismo che dimostra l’azione natriuretica centrale di ANP.

E che altro? ANP e l’HPA-A

Due linee di ricerca sono state seguite in modo esaustivo dal nostro gruppo fin dai primi anni ottanta. In primo luogo, l’indagine ha coinvolto il sistema neuronale ANPergico cerebrale e il suo ruolo di antagonista del sistema renina-angiotensina, la sua influenza sul rilascio di ANP, compreso il rilascio di ANP indotto dall’espansione di volume (9-14,17-18), e altri effetti ormonali del sistema ANP cerebrale su LH, prolattina, GH, TSH e secrezione di ACTH (20,24). In parallelo, abbiamo studiato la ritmicità circadiana dell’asse ipotalamo-ipofisi-surrene (HPA-A) nei ratti con accesso continuo o limitato al cibo (27). È noto che i ratti manifestano un picco circadiano di corticosterone plasmatico e ACTH appena prima dell’inizio dell’assunzione predominante di cibo (28). Abbiamo dimostrato per la prima volta variazioni circadiane e parallele di ANP e corticosterone in ratti con accesso continuo (picco alle 20:00 h) o limitato al cibo dalle 9:00 alle 11:00 h, con un picco alle 8:00 h (29). Entrambe le linee di indagine hanno portato a una migliore comprensione del rapporto tra cervello e ANP periferico che coinvolge le interazioni neuronali e peptidergiche. L’attivazione della via noradrenergica centrale è coinvolta nel rilascio di ANP indotto dall’espansione di volume e nella variazione circadiana di corticosterone e ANP nei ratti. Livelli elevati di noradrenalina e un numero elevato di alfa-2-adrenoricettori si trovano nel PVN (30), producendo un grande scoppio di assunzione di cibo e di attività all’inizio del periodo buio, simultaneamente a un aumento della frequenza cardiaca e della pressione (31). Inoltre, la via noradrenergica centrale è attivata prima del tempo di alimentazione nei ratti con restrizione alimentare. La restrizione alimentare induce un’interruzione dei modelli di attività-riposo e sonno-veglia con cambiamenti nel contenuto ippocampale di norepinefrina e serotonina, e nel contenuto corticale di serotonina (32), e neurotrasmettitori correlati all’ormone di rilascio della corticotropina (CRH) coinvolti nel comportamento alimentare (33). I modelli di alimentazione risultano da un complesso equilibrio tra fattori anoressizzanti (CRH, colecistochinina (CCK), neurotensina) e orecitari (neuropeptide Y (NPY), polipeptide pancreatico, galanina), che costituiscono un complesso circuito. CRH e NPY meritano ulteriori commenti. La restrizione alimentare induce un aumento del livello di mRNA di NPY nel nucleo arcuato e riduce il livello di mRNA di CRH nel PVN in una risposta fisiologica per ripristinare l’assunzione di cibo (34). Dallman et al. (35) hanno suggerito che il sistema NPYergico, la cui attività è aumentata dal digiuno e ridotta dall’alimentazione, dall’insulina e dalla mancanza di glucocorticoidi, può mediare l’override indotto dal digiuno dei ritmi diurni dell’HPA-A. Proponiamo che gli alti livelli di corticosterone a digiuno possono contribuire alla riduzione osservata di CRH mRNA attraverso un’azione di ANP. Inoltre, i glucocorticoidi sono in grado di stimolare la secrezione di ANP o l’attività genica (36-41). Questo effetto può essere coerente con un possibile meccanismo di controllo di feedback ipotalamo-cardio-surrene (29).

Variazioni diurne di ANP e restrizione alimentare

Perché i ratti bevono quando mangiano e mangiano quando bevono, la restrizione di acqua o cibo limita efficacemente il consumo di entrambi (35). Per verificare l’ipotesi che la restrizione alimentare sia uno “zeitgeber” fondamentale per la variazione diurna di corticosterone, ACTH e ANP e per determinare il ruolo della restrizione idrica, abbiamo studiato questi ritmi nei ratti privati dell’acqua (acqua dalle 9:00 alle 11:00). I ratti privati dell’acqua hanno mostrato un doppio picco di corticosterone alle 8:00 e alle 20:00 e un picco di ACTH alle 8:00, e non hanno mostrato variazioni diurne di ANP. Abbiamo concluso che l’assunzione di cibo è un sincronizzatore più importante dell’assunzione di acqua per l’attività e la ritmicità HPA. Riteniamo che gli effetti della restrizione idrica sulla secrezione di corticosterone e ACTH siano mediati dai cambiamenti nell’assunzione di cibo, poiché c’è uno scoppio spontaneo di alimentazione in presenza di una fornitura di acqua. I ratti con restrizione idrica sono meno attivi durante il periodo di luce rispetto ai ratti con restrizione alimentare. Infatti, i ratti a restrizione alimentare con assunzione esclusiva di NaCl 0,9% o 1,5% mostrano una maggiore iperattività e un comportamento più intenso di ricerca di bevande, abolendo così la variazione circadiana diurna di ANP dovuta a un’elevata secrezione di ANP durante questo periodo. Ratti adrenalectomizzati alimentati liberamente non hanno mostrato alcuna variazione diurna ANP. Questo può essere attribuito a una riduzione dell’assunzione spontanea di cibo e dell’attività durante il periodo di buio rispetto al periodo di luce, a causa di una riduzione degli alfa-2-adrenocettori nel PVN, come dimostrato da Bhakthavatsalam e Leibowitz (42) e Jhanwar-Uniyal et al. (30). Non sappiamo se un effetto stimolante dei glucocorticoidi sulla trascrizione genica di ANP contribuisce al picco serale ANP e viene eventualmente soppresso dalla surrenalectomia (ADX). Abbiamo dimostrato che il desametasone (50 µg/kg di peso corporeo) somministrato per via intraperitoneale ai ratti ADX ha prodotto una drastica riduzione dell’ACTH accompagnata da un pronunciato aumento dell’ANP entro 90 minuti. Questo risultato suggerisce che un aumento simultaneo del contenuto di ANP portale può mediare la riduzione dell’ipersecrezione di ACTH nei ratti ADX. È interessante che questo meccanismo di feedback utilizza lo stesso recettore di tipo II che media l’elevata assunzione di cibo che si verifica all’inizio del buio, che è abolito da ADX e ripristinato dal corticosterone (43).

ANP, un peptide legato all’alimentazione? Azioni periferiche o centrali?

L’interazione tra insulina e corticosteroide serve come un ciclo di feedback ormonale periferico che regola il ben noto sistema di alimentazione e digiuno NPYergic, ma se i livelli plasmatici di insulina fossero elevati nel tentativo di aumentare i livelli di insulina del SNC (nella speranza di osservare una conseguente diminuzione dell’assunzione di cibo) l’ipoglicemia risultante provocherebbe un aumento di emergenza dell’assunzione di cibo (44). Allo stesso modo, se i livelli plasmatici di ANP fossero aumentati fino ai livelli elevati necessari per inibire l’HPA-A, l’ipotensione risultante potrebbe avere un effetto stimolante. Pertanto, i siti centrali di ANP (PVN, nucleo arcuato, ipotalamo laterale perifornico, AV3V, organo subfornico, nucleo sopraottico) possono agire come siti integratori di un sistema complesso che accoppia alimentazione, HPA-A, attività fisiche e stato cardiovascolare. I corticosteroidi e l’insulina possono agire come segnali periferici, e il locus ceruleus, il nucleo tractus solitarius e il nucleo dorsomediale come stazioni intermedie. L’attivazione delle vie noradrenergiche e serotoninergiche può essere coinvolto, ma la natura di altre interazioni e peptidi merita ulteriori studi.

1. De Bold AJ, Borenstein HB, Yerss AT & Sonnenberg H (1981). Una risposta natriuretica rapida e potente all’iniezione endovenosa di estratto miocardico atriale nei ratti. Life Sciences, 28: 89-94.

2. De Bold AJ (1985). Fattore natriuretico atriale. Un ormone prodotto dal cuore. Scienza, 230: 767-770.

3. Vesely DL, Douglass MA, Dietz JR, Giordano AT, McCormick MT, Rodrigues-Paz G & Schocken DD (1994). Feedback negativo di peptidi natriuretici atriali. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 78: 1128-1134.

4. Rosenzweig A & Seidman CE (1991). Fattore natriuretico atriale e ormoni peptidici correlati. Rassegna annuale di biochimica, 60: 229-255.

5. Imura H, Nakao K & Itoh H (1992). Il sistema del peptide natriuretico nel cervello: implicazioni nel controllo centrale delle funzioni cardiovascolari e neuroendocrine. Frontiers in Neuroendocrinologia, 13: 217-249.

6. Ma LY, Zhang ML, Yang XD, Tian DR, Qi JS & Zhang DM (1991). Neuroendocrinologia del polipeptide natriuretico atriale nel cervello. Neuroendocrinologia, 53: 12-17.

7. Phillips MI, Kimura B, Wang H & Hoffman WE (1989). Effetto della vagotomia sul cervello e plasma peptide natriuretico atriale durante l’emorragia. American Journal of Physiology, 257: 1393-1399.

8. Bahner U, Geiger H, Palkovits M, Gantem D, Michel J & Heidland A (1990). Peptidi natriuretici atriali nei nuclei cerebrali di ratti con diabete insipido ereditario (ratti Brattleboro). Neuroendocrinologia, 51: 721-727.

9. Antunes-Rodrigues J, Ramalho MJ, Reis LC, Menani JV & Turrin MQA (1991). Lesioni dell’ipotalamo e dell’ipofisi inibiscono il rilascio indotto dall’espansione del volume del peptide natriuretico atriale. Atti della National Academy of Sciences, USA, 88: 2956-2960.

10. Antunes-Rodrigues J, Machado BH, Andrade HA, Mauad H, Ramalho MJ, Reis LC, Silva-Netto CR, Favaretto ALV, Gutkowska J & McCann SM (1992). Barorecettori carotidei-aortici e renali mediano il rilascio di peptide natriuretico atriale indotto dall’espansione del volume di sangue. Atti della National Academy of Sciences, USA, 89: 6828-6831.

11. Antunes-Rodrigues J, Marubayashi U, Favaretto ALV & Gutkowska J (1993). Ruolo essenziale dei recettori ipotalamici muscarinici e alfa-adrenergici nel rilascio del peptide natriuretico atriale indotto dall’espansione del volume di sangue. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA, 90: 10240-10244.

12. Antunes-Rodrigues J, Picanço-Diniz WL, Favaretto ALV, Gutkowska J & McCann SM (1993). Neuroni del peptide natriuretico atriale del cervello svolgono un ruolo essenziale nel rilascio indotto dall’espansione del volume di peptide natriuretico atriale e natriuresi. Neuroendocrinologia, 58: 696-700.

13. Antunes-Rodrigues J, Ramalho MJ, Reis LC, Picanço-Diniz DWL, Favaretto ALV, Gutkowska J & McCann SM (1993). Il possibile ruolo dell’endotelina che agisce nell’ipotalamo per indurre il rilascio del peptide natriuretico atriale e la natriuresi. Neuroendocrinologia, 58: 701-708.

14. Reis LC, Ramalho MJ, Favaretto AL, Gutkowska J, McCann SM & Antunes-Rodrigues J (1994). Partecipazione del sistema serotoninergico ascendente nella stimolazione del rilascio di peptide natriuretico atriale. Atti della National Academy of Sciences, USA, 91: 12022-12026.

15. Manning PT, Scwartz D, Katsube NC, Holmberg SW & Needleman P (1985). Vasopressina-stimolato il rilascio di atriopeptina: antagonisti endocrini in omeostasi dei fluidi. Scienza, 229: 395-397.

16. Haanwinckel MA, Elias LK, Favaretto ALV, Gutkowska J, McCann SM & Antunes-Rodrigues J (1995). L’ossitocina media il rilascio di peptide natriuretico atriale e natriuresi dopo l’espansione del volume nel ratto. Atti della National Academy of Sciences, USA, 92: 7902-7906.

17. Antunes-Rodrigues J, McCann SM & Samson WK (1986). La somministrazione centrale del fattore natriuretico atriale inibisce la preferenza salina nel ratto. Endocrinologia, 118: 1726-1728.

18. Baldissera S, Menani JV, Sotero S, Favaretto ALV, Gutkowska J, Turrin MQA, McCann SM & Antunes-Rodrigues J (1989). Ruolo dell’ipotalamo nel controllo del rilascio del peptide natriuretico atriale. Atti della National Academy of Sciences, USA, 86: 9621-9625.

19. Palkovits M, Eskay RL & Antoni FA (1987). Il peptide natriuretico atriale nell’eminenza mediana è di origine del nucleo paraventricolare. Neuroendocrinologia, 46: 542-544.

20. Franci CR, Anselmo-Franci JA & McCann SM (1990). Effetti opposti di immunoneutralizzazione centrale di angiotensina II o peptide natriuretico atriale sul rilascio di ormone luteinizzante in ratti ovariectomizzati. Neuroendocrinologia, 51: 683-687.

21. Fink G, Dow RC, Casley D, Johnston CI, Lim AT, Copolov DL, Bennie J, Carroll S & Dick H (1991). Il peptide natriuretico atriale è un inibitore fisiologico del rilascio di ACTH: prove di immunoneutralizzazione in vivo. Journal of Endocrinology, 131: 9-12.

22. Antoni FA, Hunter EFM, Lowry PJ, Noble JM & Seckl JR (1992). Atriopeptina: un ormone endogeno che inibisce il rilascio di corticotropina. Endocrinologia, 130: 1753-1755.

23. Fink G, Dow RC, Casley D, Johnston CI, Bennie J, Carroll S & Dick H (1992). Il peptide natriuretico atriale è coinvolto nella risposta ACTH allo stress e al feedback negativo dei glucocorticoidi nel ratto. Journal of Endocrinology, 135: 37-43.

24. Franci CR, Anselmo-Franci JA & McCann SM (1992). Il ruolo del peptide natriuretico atriale endogeno nel rilascio a riposo e indotto da stress di corticotropina, prolattina, ormone della crescita e ormone stimolante la tiroide. Atti della National Academy of Sciences, USA, 89: 11391-11395.

25. Lim AT, Shewardt WJ, Copolov D, Windmill D & Fink G (1990). Fattore natriuretico atriale viene rilasciato nel sangue portale ipofisario: prova diretta che il fattore natriuretico atriale può essere un neuroormone coinvolto nel controllo ipotalamico ipofisario. Giornale di Neuroendocrinologia, 2: 15-17.

26. McCann SM, Gutkowska J, Franci CR, Favaretto ALV & Antunes-Rodrigues J (1994). Controllo ipotalamico dell’assunzione e dell’escrezione di acqua e sale. Brazilian Journal of Medical and Biological Research, 27: 865-884.

27. Moreira AC & Krieger DT (1982). Gli effetti della vagotomia subdiaframmatica sulla ritmicità circadiana del corticosterone nei ratti con accesso continuo o limitato al cibo. Fisiologia e Comportamento, 28: 787-790.

28. Krieger DT (1979). Ritmi in CRF, ACTH e Corticosteroidi. Raven Press, New York, 123-142.

29. Oliveira MHA, Antunes-Rodrigues J, Leal AMO, Elias LLK & Moreira AC (1993). Variazioni circadiane del peptide natriuretico atriale del plasma e del corticosterone nei ratti con accesso continuo o limitato al cibo. Life Sciences, 53: 1795-1801.

30. Jhanwar-Uniyal M, Roland CR & Leibowitz SF (1986). Ritmo diurno dei recettori alfa-2-noradrenergici nel nucleo paraventricolare e altre aree cerebrali: relazione al corticosterone circolante e al comportamento alimentare. Life Sciences, 38: 473-482.

31. Jansen BJA, Tyssen CM, Duindam H & Rietveld WJ (1994). Lesioni soprachiasmatiche eliminare 24 ore di variabilità della pressione sanguigna nei ratti. Fisiologia e Comportamento, 55: 302-311.

32. Krieger DT (1974). La restrizione alimentare e idrica sposta il corticosterone, la temperatura, l’attività e la periodicità delle amine del cervello. Endocrinologia, 95: 1195-1201.

33. Beck B (1992). Colecistochinina, neurotensina e fattore di rilascio della corticotropina, tre importanti peptidi anoressigeni. Annales d’Endocrinologie, 53: 44-56.

34. Brady LS, Smith MA, Gold PW & Herkenham M (1990). Alterata espressione di mRNA di neuropeptidi ipotalamici in ratti con restrizioni alimentari e privi di cibo. Neuroendocrinologia, 52: 441-447.

35. Dallman MF, Strack AM, Akana SF, Bradbury MJ, Hanson ES, Scribner KA & Smith M (1993). Festa e carestia: ruolo critico dei glucocorticoidi con l’insulina nel flusso energetico quotidiano. Frontiers in Neuroendocrinologia, 5: 315-321.

36. Gardner DG, Hane S, Trachewsky D, Schenk D & Baxter JD (1986). Atrial natriuretic peptide mRNA è regolato da glucocorticoidi in vivo. Biochemical and Biophysical Research Communications, 139: 1047-1054.

37. Shields PP, Dixon JE & Glembotski CC (1988). La secrezione del fattore natriuretico atriale (99-126) da miociti cardiaci in coltura è regolata da glucocorticoidi. Journal of Biological Chemistry, 263: 12619-12628.

38. Huang W, Choi GL, Yang Z, Copolov DL & Lim AT (1991). Plasticità di responsività adrenorecettore sulla secrezione di irANP e pro-ANP mRNA espressione in culture di neuroni ipotalamici: modulazione da dexamethasone. Endocrinologia, 128: 2591-2600.

39. Weidmann P, Matter DR, Matter EE, Gnadinger MP, Uehlinger DE, Shaw S & Hess C (1988). Glucocorticoide e mineralocorticoide stimolazione del rilascio di peptide natriuretico atriale nell’uomo. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 66: 1233-1239.

40. Saxenhofer H, Angst M, Weidmann P, Shaw SG & Ferrier C (1988). Stimolazione indotta da corticosteroidi del peptide natriuretico atriale nell’uomo. Acta Endocrinologica, 118: 179-186.

41. Garcia R, Debinski W, Gutkowska J, Kuchel O, Thibault G, Genest J & Cantin M (1985). Gluco- e mineralocorticoidi possono regolare l’effetto natriuretico e la sintesi e il rilascio del fattore natriuretico atriale dagli atri del ratto in vivo. Biochemical and Biophysical Research Communications, 131: 806-814.

42. Bhakthavatsalam P & Leibowitz SF (1986). Ritmo di alimentazione alfa-2 noradrenergico nel nucleo paraventricolare: relazione con il corticosterone. American Journal of Physiology, 250: 83-88.

43. Tempel LD, Yamamoto M, Kim T & Leibowitz SF (1991). Effetti della surrenalectomia sui modelli di selezione dei macronutrienti nel ratto. Farmacologia, biochimica e comportamento, 40: 861-866.

44. Schwartz MW, Figlewicz DP, Baskin DG, Woods SC & Porte D (1992). L’insulina nel cervello: un regolatore ormonale del bilancio energetico. Endocrine Reviews, 13: 387-414.

Riconoscimenti

Gli autori ringraziano Miss Ana Cristina C. Pereira e Mr. Alex A. da Silva per l’assistenza di segreteria.

Corrispondenza e note

Indirizzo per la corrispondenza: A.C. Moreira, Departamento de Clínica Médica, Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, USP, 14048-900 Ribeirão Preto, SP, Brasil. Fax: 55 (016) 633-1144.

Presentato al Simposio Internazionale “Neuroendocrine Control of Body Fluid Homeostasis”, Ribeirão Preto, SP, Brasile, 17-20 agosto 1996. Ricerca sostenuta da CNPq e HCFMRP-FAEPA. Pubblicazione sostenuta da FAPESP. Ricevuto il 29 novembre 1996. Accettato il 6 gennaio 1997.

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